WikiDer > Расщепление белков, связанное с эндоплазматическим ретикулумом

Endoplasmic-reticulum-associated protein degradation
Расщепление белка, связанное с эндоплазматическим ретикулумом, является одним из нескольких путей деградации белка в ЭПР.

Расщепление белков, связанное с эндоплазматическим ретикулумом (ERAD) обозначает сотовый пути, который нацелен на неправильно свернутые белки эндоплазматический ретикулум за убиквитинирование и последующая деградация белковым комплексом, называемым протеасома.

Механизм

Процесс ERAD можно разделить на три этапа:

Распознавание неправильно свернутых или мутировавших белков в эндоплазматическом ретикулуме

Распознавание неправильно свернутых или мутировавших белков зависит от обнаружения субструктур в белках, таких как экспонированные гидрофобный регионы, непарные цистеин остатки и незрелые гликаны.

В млекопитающее Например, в клетках существует механизм, называемый процессингом гликанов. В этом механизме лектин-тип шапероны калнексин/кальретикулин (CNX / CRT) предоставляют незрелым гликопротеинам возможность достичь своей нативной конформации. Они могут сделать это путем реглюкозилирования этих гликопротеинов с помощью фермента, называемого UDP-глюкоза-гликопротеин глюкозилтрансфераза также известный как UGGT. Однако окончательно неправильно свернутые белки необходимо экстрагировать из CNX / CRT. Это осуществляется членами семейства EDEM (усиливающий деградацию ER α-маннозидазоподобный белок) (EDEM1-3) и ER маннозидазы I. Эта маннозидаза удаляет один манноза остаток от гликопротеина, и последний распознается EDEM. В конечном итоге EDEM будет нацеливаться на неправильно свернутые гликопротеины для деградации, облегчая связывание ERAD. лектины OS9 и XTP3-B.[1]

Ретро-транслокация в цитозоль

Поскольку убиквитин-протеасомная система (UPS) расположена в цитозоле, неправильно уложенные на концах белки д. Транспортировать из эндоплазматического ретикулума обратно в цитоплазму. Большинство доказательств указывает на то, что убиквитин-протеинлигаза Hrd1 E3 может функционировать как ретротранслокон или дислокон для транспорта субстратов в цитозоль. Hrd1 не требуется для всех событий ERAD, поэтому вполне вероятно, что другие белки участвуют в этом процессе. Например, гликозилированные субстраты распознаются лектином E3 Fbs2.[2] Кроме того, это перемещение требует движущей силы, определяющей направление транспорта. С полиубиквитинирование необходим для экспорта субстраты, широко считается, что эта движущая сила обеспечивается факторами связывания убиквитина. Одним из таких факторов связывания убиквитина является комплекс Cdc48p-Npl4p-Ufd1p у дрожжей. У людей есть гомолог Cdc48p, известный как валозин-содержащий белок (VCP / p97) с той же функцией, что и Cdc48p. VCP / p97 переносит субстраты из эндоплазматического ретикулума в цитоплазму благодаря своей АТФазной активности.

Убиквитин-зависимая деградация протеасомами

Убиквитинирование окончательно неправильно свернутых белков вызвано каскадом ферментативный реакции. Первая из этих реакций происходит, когда убиквитин-активирующий фермент E1 гидролизует АТФ и образует высокоэнергетический тиоэфир связь между остатком цистеина в его активном сайте и C-конец убиквитина. Полученный активированный убиквитин затем передается в E2, который является убиквитин-конъюгированный фермент. Другая группа ферментов, более конкретно убиквитиновые протеинлигазы, называемые E3, связываются с неправильно свернутым белком. Затем они выравнивают белок и E2, таким образом облегчая присоединение убиквитина к остаткам лизина неправильно свернутого белка. После последовательного добавления молекул убиквитина к остаткам лизина ранее присоединенного убиквитина образуется цепь полиубиквитина. Производится полиубиквитинированный белок, который распознается специфическими подразделения в 19S кэппинговых комплексах 26S протеасомы. В дальнейшем полипептидная цепь подается в центральную камеру области ядра 20S, которая содержит протеолитически активные центры. Убиквитин расщепляется перед окончательным перевариванием деубиквитинирующими ферментами. Этот третий шаг очень тесно связан со вторым, так как убиквитинирование происходит во время события транслокации. Однако протеасомная деградация происходит в цитоплазме.

Оборудование для убиквитинизации ERAD

RING-палец, закрепленный на мембране ER, содержащий убиквитинлигазы Hrd1 и Doa10, являются основными медиаторами убиквитинирования субстрата во время ERAD. Хвост закреплен мембранный белок Ubc6, а также Ubc1 и Cue1-зависимый мембраносвязанный Ubc7 являются ферментами, конъюгирующими с убиквитином, участвующими в ERAD.

Контрольно-пропускные пункты

Поскольку вариации ERAD-субстратов огромны, было предложено несколько вариаций механизма ERAD. Действительно, было подтверждено, что растворимый, мембрана и трансмембранный белки распознаются разными механизмами. Это привело к выявлению 3 различных путей, которые фактически составляют 3 контрольных точки.

  • Первая контрольная точка называется ERAD-C и контролирует состояние сворачивания цитозольный домены мембранных белков. Если дефекты обнаруживаются в цитозольных доменах, эта контрольная точка удаляет неправильно свернутый белок.
  • Когда будет обнаружено, что цитозольные домены правильно свернуты, мембранный белок перейдет ко второй контрольной точке, где просвет отслеживаются домены. Эта вторая контрольная точка называется путем ERAD-L. Не только мембранные белки, пережившие первую контрольную точку, контролируются на предмет их просветных доменов, но также и растворимые белки проверяются этим путем, поскольку они полностью просветлены и, таким образом, обходят первую контрольную точку. Если обнаружено поражение в просветных доменах, задействованный белок обрабатывается для ERAD с использованием набора факторов, включая везикулярный транспортный механизм, который транспортирует неправильно свернутые белки из эндоплазматического ретикулума в аппарат Гольджи.
  • Также была описана третья контрольная точка, которая основана на проверке трансмембранных доменов белков. Он называется путем ERAD-M, но не очень ясно, в каком порядке он должен быть размещен относительно двух ранее описанных путей.

Заболевания, связанные с нарушением функции ERAD

Поскольку ERAD является центральным элементом секреторного пути, нарушения его активности могут вызывать ряд заболеваний человека. Эти расстройства можно разделить на две группы.

Первая группа является результатом мутации в компонентах ERAD, которые впоследствии теряют свою функцию. Потеряв свою функцию, эти компоненты больше не могут стабилизировать аберрантные белки, так что последние накапливаются и повреждают клетку. Примером заболевания, вызванного этой первой группой расстройств, является болезнь Паркинсона. Это вызвано мутацией паркина. ген. Паркин представляет собой белок, который действует в комплексе с CHIP как убиквитинлигаза и преодолевает накопление и агрегацию неправильно свернутых белков.

[Существует множество теорий, касающихся причин болезни Паркинсона, помимо представленной здесь. Многие из них можно найти в разделе Википедии, посвященном болезни Паркинсона.]

В отличие от этой первой группы расстройств, вторая группа вызвана преждевременной деградацией секреторных или мембранных белков. Таким образом, эти белки не могут быть размещены в дистальных отделах, как в случае кистозный фиброз.

ERAD и ВИЧ

Как описано ранее, добавление цепей полиубиквитина к субстратам ERAD является критическим для их экспорта. ВИЧ использует эффективный механизм для смещения одинарного мембранного белка-хозяина, CD4, из ER и отправляет его в ERAD. Белок Vpu ВИЧ-1 представляет собой белок на мембране ER и нацелен на вновь образованный CD4 в эндоплазматическом ретикулуме для деградации цитозольными протеасомами.[3] Vpu использует только часть процесса ERAD для разложения CD4. CD4 обычно является стабильным белком и вряд ли является мишенью для ERAD. Однако ВИЧ производит мембранный белок. Впу связывается с CD4. Белок Vpu в основном удерживает CD4 в ER за счет SCFβ-TrCP-зависимого убиквитинирования цитозольного хвоста CD4 и взаимодействий трансмембранного домена (TMD).[3] CD4 Gly415 вносит свой вклад в взаимодействия CD4-Vpu, несколько TMD-опосредованных механизмов с помощью Vpu ВИЧ-1 необходимы для подавления регуляции CD4 и, таким образом, содействия вирусному патогенезу. CD4, удерживаемый в ER, будет мишенью для варианта пути ERAD, а не преимущественно появляться на плазматической мембране без присутствия Vpu через путь RESET. Vpu опосредует удержание CD4 в ER и усиление деградации. Как ВПУ фосфорилированный, он имитирует субстраты для комплекса E3 SCFβTrCP. В клетках, инфицированных ВИЧ, SCFβTrCP взаимодействует с Vpu и убиквитинирует CD4, который впоследствии разрушается протеасомой. Сам впу ускользает от деградации.

Вопросов

Основные открытые вопросы, связанные с ERAD:

  • Как более точно распознаются неправильно свернутые белки?
  • Как субстраты ERAD / субстраты просвета и субстраты мембран дифференцируются для ретротранслокации?
  • Сохраняется ли ретротранслокация в дрожжевой системе человека?
  • Каков канал ретротранслокации белков ER в просвете?
  • Какая лигаза E3, наконец, помечает белки для протеасомной деградации?[нужна цитата]

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ Гройсман Б., Шенкман М., Рон Э., Ледеркремер Г.З. (январь 2011 г.). «Обрезка маннозы требуется для доставки гликопротеина из EDEM1 в XTP3-B и на этапах деградации, связанной с поздним эндоплазматическим ретикулумом». Журнал биологической химии. 286 (2): 1292–300. Дои:10.1074 / jbc.M110.154849. ЧВК 3020737. PMID 21062743.
  2. ^ Гройсман Б., Авезов Э., Ледеркремер Г.З. (сентябрь 2006 г.). «Убиквитин-лигазы E3 HRD1 и SCFFbs2 распознают белковые фрагменты и сахарные цепи, соответственно, субстрата деградации, ассоциированного с ER». Израильский химический журнал. 46 (2): 189–96. Дои:10.1560 / 2QPD-9WP9-NCYK-58X3.
  3. ^ а б Магадан Дж. Г., Перес-Виктория Ф. Дж., Суграт Р., Йе Й, Штребель К., Бонифачино Дж. С. (апрель 2010 г.). «Многослойный механизм подавления CD4 с помощью Vpu ВИЧ-1, включающий различные этапы удержания ER и нацеливания на ERAD». Патогены PLOS. 6 (4): e1000869. Дои:10.1371 / journal.ppat.1000869. ЧВК 2861688. PMID 20442859.

дальнейшее чтение