WikiDer > Haemonchus contortus

Haemonchus contortus

Haemonchus contortus
CSIRO ScienceImage 10819 Хвосты 11 взрослых самок полюсного червя Haemonchus contortus barbers Все черви взяты от одной овцы, зараженной одним штаммом этого вида червей.
Эти 11 Haemonchus contortus Взрослые самки были взяты от одной овцы, зараженной одним штаммом этого вида червей.
Haemonchus contortus.jpg
Haemonchus contortus яйцо
Научная классификация
Королевство:
Animalia
Тип:
Нематода
Учебный класс:
Secernentea
Подкласс:
Рабдития
Заказ:
Strongylida
Семья:
Trichostrongylidae
Род:
Гемонх
Разновидность:
H. contortus
Биномиальное имя
Haemonchus contortus
(Рудольфи, 1803) Кобб, 1898

Haemonchus contortus, также известный как парикмахерская червь, очень распространенный паразит и один из самых патогенных нематоды из жвачные животные. Взрослые черви прикрепляются к сычужный слизистая оболочка и питаются кровью. Этот паразит отвечает за анемия, отек, и смерть зараженных овца и козы, в основном летом в теплом влажном климате.[1]

Самки могут откладывать более 10 000 яиц в день,[2] которые переходят от животного-хозяина в кал. Вылупившись из яиц, H. contortus личинки линька несколько раз, в результате чего форма L3 заразный для животных. Хозяин поедает этих личинок на пастбище. Личинки L4, образовавшиеся после очередной линьки, и взрослые черви сосут кровь в сычуге животного, что потенциально может вызвать анемию и отек, которые в конечном итоге могут привести к смерти.[3]

Инфекция, называемая гемонхозом, причиняет большие экономические потери фермерам во всем мире, особенно тем, кто живет в более теплом климате. Антигельминтные средства используются для профилактики и лечения этих и других глистных инфекций, но сопротивление из паразиты против этих химикаты растет. Некоторые породы, такие как Западноафриканский карликовый козел и крупный рогатый скот N'Dama, более устойчивы, чем другие породы к H. contortus (гемонхотолерантность).[4]

Морфология

Яйцо желтоватого цвета. Яйцо составляет около 70–85 мкм в длину и 44 мкм в ширину, а на ранних стадиях дробления содержится от 16 до 32 клеток. Взрослая самка имеет длину 18–30 мм и легко узнаваема по фирменной окраске «шест». Красный и белый вид обусловлен тем, что H. contortus является питателем крови, и можно увидеть белые яичники, свернувшиеся вокруг заполненного кровью кишечника. Взрослый самец червя намного меньше, 10-20 мм в длину, и демонстрирует отчетливую черту хорошо развитой копулятивной сумки, содержащей асимметричную спинную долю и Y-образный спинной луч.

Жизненный цикл

Взрослая самка червя может выделять от 5000 до 10000 яиц, которые выводятся с фекалиями. Затем яйца развиваются во влажных условиях в фекалиях и продолжают развиваться в ювенильную стадию L1 (рабдитовидную) и L2, питаясь бактериями в помете. Стадия L1 обычно наступает в течение четырех-шести дней при оптимальных условиях 24–29 ° C. Рабдитформа L2 сбрасывает кутикулу и затем развивается в нитевидных инфекционных личинок L3. Форма L3 имеет защитную кутикулу, но в сухих жарких условиях выживаемость снижается. Овцы, козы и другие жвачные животные заражаются, когда они пасутся и проглатывают инфекционные личинки L3. Инфекционные личинки проходят через первые три камеры желудка и достигают сычуга. Там L3 сбрасывают кутикулу и зарываются во внутренний слой сычуга, где они развиваются в L4, обычно в течение 48 часов, или в предвзрослых личинок. Затем личинки L4 линяют и развиваются во взрослую форму L5. Взрослые самцы и самки спариваются и живут в сычуге, где питаются кровью.

Генетика

В H. contortus Проект генома был опубликован в 2013 году.[5] Дальнейшие работы по завершению эталонного генома ведутся в Wellcome Trust Sanger Institute[6] в сотрудничестве с Университетом Калгари, Университетом Глазго и Научно-исследовательский институт Моредуна. Разработка генетических и геномных ресурсов для этого паразита будет способствовать выявлению генетических изменений, вызывающих глистогонную болезнь. сопротивление и может помочь в разработке новых лекарств или вакцина для борьбы с болезнями и улучшения здоровья животных.

Патогенность

Клинические признаки во многом связаны с кровопотерей. Внезапная смерть может быть единственным наблюдением при острой инфекции, в то время как другие общие клинические признаки включают бледность, анемию, отек, плохую бережливость, летаргию и депрессию. Можно увидеть скопление жидкости в поднижнечелюстной ткани, явление, обычно называемое «бутылочной челюстью». Значительно сокращаются рост и производство.

Профилактика и лечение

Профилактическое противогельминтное лечение необходимо для предотвращения инфицирования в эндемичных регионах, но, где это возможно, оправдано снижение зависимости от химического лечения с учетом быстрого роста устойчивости к противогельминтным средствам. Коммерческая вакцина, известная как Barbervax в Австралии или Wirevax в Южной Африке, стала доступной в последние годы. Это работает в основном за счет снижения яйценоскости и, следовательно, загрязнения пастбищ. Вакцина содержит белки слизистой оболочки кишечника червя Барберсова полюса. Животное вырабатывает антитела против белка, циркулирующего в крови. Когда полярный червь цирюльника пьет кровь, антитела прикрепляются к его слизистой оболочке желудка, предотвращая пищеварение и голодая животное. После этого червь производит меньше яиц и в конечном итоге погибает. [7]

Целевые селективные методы лечения, такие как ФАМАЧА Метод может оказаться полезным для уменьшения количества интервалов дозирования, тем самым уменьшая процент выживших паразитов, устойчивых к глистогонным средствам. Подсчет фекальных яиц используется для отслеживания уровней заражения паразитами, восприимчивости отдельных животных и антигельминтной эффективности.

Другие стратегии управления включают селективное разведение овец или коз, более устойчивых к паразитам (например, путем отбраковки наиболее восприимчивых животных или введения устойчивых к паразитам пород, таких как Местные овцы побережья Мексиканского залива); тщательное управление пастбищами, например управляемый интенсивный ротационный выпас, особенно в пик сезона паразитов; и «очистка» зараженных пастбищ путем сенокошения, обработки почвы или выпаса невосприимчивых видов животных (например, свиней или домашних птиц).[8]

Недавние исследования также показали, что использование шерстяных пород овец, таких как катадины, дорперы и Санта-Крус, может быть выбрано для устойчивости к внутренним паразитам по экономическим стандартам; кроме того, шерстяные породы обладают устойчивостью, не демонстрируя какого-либо значительного влияния на рост их потомства.[9]

Один из самых рискованных методов, которые можно использовать для лечения, - это использование частиц оксидной проволоки из меди (COWP), чтобы помочь в уничтожении паразитов внутри кишечника без использования химикатов. Тем не менее, у овец необходимо очень внимательно следить за дозированием, потому что, если им вводить слишком высокую дозу, они могут стать токсичными для меди. Для COWP необходимо ввести минимальную рекомендуемую дозу, чтобы оставаться безопасной для овец. Проведенное исследование показало, что лечение COWP снижает количество фекальных яиц более чем на 85%. Обработка проволочными частицами из оксида меди может привести к меньшей зависимости от глистогонных средств, потому что COWP позволяет снизить распространение паразитарных инфекций, особенно если производитель пытается сократить популяцию личинок на своих пастбищах.[10]

Недавние исследования показывают, что фугальные лектины способны подавлять развитие личинок. Эти грибковые лектины представляют собой лектины Corprinopsis cinerea - CCL2, CGL2; Лектин Aleuria aurantia - AAL; и агглютинин Marasmius oreades - MOA. Эти четыре токсичных лектина связываются со специфическими гликановыми структурами, обнаруженными в H. controtus. Некоторые из этих гликановых структур могут представлять антигены, которые не подвергаются воздействию иммунной системы хозяина и, таким образом, имеют потенциал для разработки вакцины или лекарственного средства.[11]

Рекомендации

  1. ^ Берк, Джоан, зоотехник. Борьба с червем парикмахерской у овец и коз на юге США USDA, ARS, Исследовательский центр малых ферм Dale Bumpers, Бунвилль, Арканзас.>
  2. ^ "Червь цирюльника (Haemonchus contortus) в компании Australian Wool Limited ». Архивировано из оригинал на 2012-04-30. Получено 2010-11-04.
  3. ^ "Гемонх, Ostertagia, и Трихостронгил spp ". Ветеринарное руководство Merck. 2006. Получено 2007-07-01.
  4. ^ Chiejina, Samuel N; Бенке, Ежи М; Fakae, Barineme B (2015). «Гемонхотолерантность у карликовых коз Западной Африки: вклад в устойчивую борьбу с гельминтами без применения глистов у традиционно выращиваемых нигерийских карликовых коз». Паразит. 22: 7. Дои:10.1051 / паразит / 2015006. ЧВК 4321401. PMID 25744655.
  5. ^ Лэйнг, Роз; Кикучи, Тайсэй; Мартинелли, Аксель; Цай, Ишэн Дж; Бук, Робин Н; Редман, Элизабет; Холройд, Нэнси; Бартли, Дэвид Дж; Бизли, Хелен; Бриттон, Коллетт; Карран, Дэвид; Девани, Эйлин; Gilabert, Aude; Хант, Мартин; Джексон, Фрэнк; Джонстон, Стефани Л; Крюков, Иван; Ли, Кейю; Моррисон, Элисон А; Рид, Адам Дж; Саргисон, Нил; Сондерс, Гэри I; Васмут, Джеймс Д; Вольстенхолм, Адриан; Берриман, Мэтью; Gilleard, John S; Коттон, Джеймс А. (2013). «Геном и транскриптом Haemonchus contortus, ключевой модели паразита для открытия лекарств и вакцин». Геномная биология. 14 (8): R88. Дои:10.1186 / gb-2013-14-8-r88. ЧВК 4054779. PMID 23985316.
  6. ^ https://www.sanger.ac.uk/resources/downloads/helminths/haemonchus-contortus.html
  7. ^ "Haemonchus contortus". Научно-исследовательский институт Моредуна. Моредун. Получено 16 февраля 2019.
  8. ^ Андерсон, Самуэль. «Сводка результатов: исследование производителей мелких жвачных в Новой Англии». Северо-восточный центр ИПМ, 2013. http://www.northeastipm.org/neipm/assets/File/New-England-Small-Ruminant-Survey-Results-2013.pdf
  9. ^ Tadesse, D; Puchala, R; Гипсон, Т. А; Португалия, I; Сахлу, Т; Доусон, Л. Дж; Гетч, А. Л. (2017). «692 Влияние условий высокой тепловой нагрузки на ректальную температуру, частоту дыхания и частоту дыхания у шерстистых пород овец из разных регионов США». Журнал зоотехники. 95: 337–8. Дои:10.2527 / asasann.2017.692.
  10. ^ Soli, F; Terrill, T.H; Shaik, S.A; Getz, W.R; Миллер, Дж. Э; Вангуру, М; Берк, Дж. М. (2010). «Эффективность проволочных частиц оксида меди против желудочно-кишечных нематод у овец и коз». Ветеринарная паразитология. 168 (1–2): 93–6. Дои:10.1016 / j.vetpar.2009.10.004. PMID 19931291.
  11. ^ Хайм, Кристиан; Герцберг, Губертус; Бутски, Алекс; Блейлер-Мартинес, Сильвия; Эби, Маркус; Deplazes, Питер; Кюнцлер, Маркус; Штефанич, Саша (2015). «Подавление развития личинок Haemonchus contortus грибными лектинами». Паразиты и векторы. 8: 425. Дои:10.1186 / с13071-015-1032-х. ЧВК 4539729. PMID 26283415.

дальнейшее чтение